Gefiedertes Heiligenkraut

Gefiedertes Heiligenkraut

Gefiedertes Heiligenkraut (Santolina pinnata)

Systematik
Ordnung: Asternartige (Asterales)
Familie: Korbblütler (Asteraceae)
Unterfamilie: Asteroideae
Tribus: Anthemideae
Gattung: Heiligenkraut (Santolina)
Art: Gefiedertes Heiligenkraut
Wissenschaftlicher Name
Santolina pinnata
Viv.

Das Gefiederte Heiligenkraut (Santolina pinnata) ist eine Pflanzenart aus der Gattung Heiligenkraut (Santolina) in der Familie der Korbblütler (Asteraceae). Es ist endemisch in der nordwestlichen Toskana verbreitet und wird selten als Zierpflanze verwendet.

Beschreibung

Gefiederte Laubblätter
Blütenköpfchen
Fruchtstand

Vegetative Merkmale

Das Gefiederte Heiligenkraut ist ein immergrüner, schwach aromatischer Halbstrauch, der rasig wächst und Wuchshöhen von 10 bis 30 Zentimeter erreicht. Die 2 bis 3,5 Zentimeter langen, gefiederten, grünen Laubblätter der nichtblühenden Sprosse haben jederseits 14 bis 19 zylindrische, 3 bis 6 Millimeter lange, fast kahle Fiederabschnitte. Die blühende Sprosse sind im oberen Teil unbeblättert oder haben nur Hochblätter.[1][2]

Generative Merkmale

Die Blütezeit reicht von Juni bis Juli. Die Blütenköpfchen sitzen meist einzeln, manchmal auch zu mehreren auf verzweigten Sprossen und haben einen Durchmesser von 5 bis 10 Millimetern. Sie bestehen aus eilanzettlichen Hüllblättern und weißen bis cremefarbenen Röhrenblüten.[1][2]

Chromosomensatz

Die Chromosomengrundzahl beträgt x = 9; es tritt Diploidie mit einer Chromosomenzahl von 2n = 18 auf.[3]

Vorkommen

Das Gefiederte Heiligenkraut ist endemisch in den Apuanischen Alpen in der nordwestlichen Toskana in Mittelitalien verbreitet.[4] Es wächst dort auf Kalkfelsen in Höhenlagen von 500 bis 1500 Metern.[5][1]

Systematik

Die Erstveröffentlichung von Santolina pinnata Viv. erfolgte 1802 durch Domenico Viviani in Elenchus Plantarum, S. 31.[6][7] Das Artepithetum pinnata bedeutet „gefiedert“.

Santolina pinnata gehört zur Sammelart Santolina chamaecyparissus agg.[8][9] und ist eng mit den drei weiteren in Italien endemischen Heiligenkräutern Santolina etrusca, Santolina ligustica und Santolina neapolitana verwandt.[5]

Verwendung

Das Gefiederte Heiligenkraut wird selten als Zierpflanze für vollsonnige, trockenwarme Steingärten und Trockenmauern genutzt. Es ist seit spätestens 1791 in Kultur und gilt als winterhart, sofern es gegen Winternässe geschützt ist.[1]

Die Blütenköpfchen werden in der traditionellen Medizin wie die der Kamille und des Grauen Heiligenkrauts als entzündungshemmende, krampflösende und wurmtreibende Mittel verwendet. Sie enthalten verschiedene Flavonoide, darunter Apigenin, Luteolin und Kaempferol, sowie die zwei Cumarine Scopoletin und Fraxetin.[10] Weitere Analysen identifizierten die Phenolverbindungen Chlorogensäure und Rosmarinsäure sowie die Flavonoide Rutin, Genistein und Myricetin als Hauptbestandteile der mit organischen Lösungsmitteln hergestellten Extrakte. Diese zeigten ein biologisches Potenzial zur Anregung von Antitumor- und entzündungshemmenden Wirkungen.[11]

Literatur

  • Antonio Giacò, Paola De Giorgi, Giovanni Astuti, Luigi Minuto, Lucia Varaldo, & Lorenzo Peruzzi: Taxonomy and distribution of the genus Santolina (Asteraceae) in Italy. In: Biogeographia – The Journal of Integrative Biogeography. Band 37, Nr. 2, 2022, ISSN 1594-7629, doi:10.21426/B637258322.
Commons: Gefiedertes Heiligenkraut (Santolina pinnata) – Sammlung von Bildern, Videos und Audiodateien

Einzelnachweise

  1. a b c d Eckehart J. Jäger, Friedrich Ebel, Peter Hanelt, Gerd K. Müller (Hrsg.): Exkursionsflora von Deutschland. Begründet von Werner Rothmaler. Band 5: Krautige Zier- und Nutzpflanzen. Springer, Spektrum Akademischer Verlag, Berlin/Heidelberg 2008, ISBN 978-3-8274-0918-8, S. 603.
  2. a b Thomas Meyer, Michael Hassler: Datenblatt Santolina pinnata mit Bestimmungsschlüssel und Fotos bei Mittelmeer- und Alpenflora.
  3. Antonio Giacò, Paola De Giorgi, Giovanni Astuti, Lucia Varaldo, Llorenç Sáez, Rodrigo Carballal, Miguel Serrano, Gabriele Casazza, Paolo Caputo, Gianluigi Bacchetta & Lorenzo Peruzzi: Diploids and polyploids in the Santolina chamaecyparissus complex (Asteraceae) show different karyotype asymmetry, Phytochemistry and Biological Activities of the Genus Santolina. In: Plant Biosystems -An International Journal Dealing with all Aspects of Plant Biology. Band 156, Nr. 5, Februar 2022, ISSN 1724-5575, S. 1237–1246, doi:10.1080/11263504.2022.2029971.
  4. Antonio Giacò, Giovanni Astuti & Lorenzo Peruzzi: Typification and nomenclature of the names in the Santolina chamaecyparissus species complex (Asteraceae). In: Taxon. Band 70, Nr. 1, Januar 2021, S. 189–201, doi:10.1002/tax.12429.
  5. a b Antonio Giacò, Paola De Giorgi, Giovanni Astuti, Luigi Minuto, Lucia Varaldo, & Lorenzo Peruzzi: Taxonomy and distribution of the genus Santolina (Asteraceae) in Italy. In: Biogeographia – The Journal of Integrative Biogeography. Band 37, Nr. 2, 2022, ISSN 1594-7629, doi:10.21426/B637258322.
  6. Domenico Viviani: Elenchus Plantarum Horti Botanici J. Car. Dinegro Observationibus quod Novas, vel Rariores Species Passim Interjectis. Genua, 1802, S. 31. eingescannt bei books.google.de.
  7. Datenblatt Santolina pinnata bei POWO = Plants of the World Online von Board of Trustees of the Royal Botanic Gardens, Kew: Kew Science.
  8. Werner Greuter (2006+): Compositae (pro parte majore). – In: W. Greuter & Eckhard von Raab-Straube (Hrsg.): Compositae. Euro+Med Plantbase - the information resource for Euro-Mediterranean plant diversity. Datenblatt Santolina chamaecyparissus aggr. In: Euro+Med Plantbase - the information resource for Euro-Mediterranean plant diversity.
  9. Compositae Working Group (CWG), 2025. Datenblatt Santolina L. In: Global Compositae Database.
  10. G. Flamini, G. Caroti Ghelli, L. Pistelli, I. Morelli: Phenolic compounds from Santolina pinnata. In: Planta Medica. Band 60, Nr. 1, Januar 1994, S. 97, doi:10.1055/s-2006-959423.
  11. Matteo Brindisi, Luca Frattaruolo, Vincenzo Sicari, Monica Rosa Loizzo, Gianni Bedini, Vittoria Rago, Rosa Tundis, Anna Rita Cappello: Santolina pinnata Viv. Exerts Promising Antitumor Activity against Breast Cancer Cells and Anti-Inflammatory Effects in LPS-Stimulated RAW 264.7 Cells. In: International Journal of Molecular Sciences. Band 23, Nr. 21, Oktober 2022, S. 12885, doi:10.3390/ijms232112885.